Puromycin 嘌呤霉素，產品編碼：PS610。

Puromycin 嘌呤霉素，

Puromycin (10 mg/mL)

01/產品概述

Puromycin是來源于Streptomyces alboniger的一種氨基核苷類抗生素，中文名為嘌呤霉素。嘌呤霉素是氨酰-tRNA分子3′末端的類似物，能夠與核糖體的A位點結合并摻入到延伸的肽鏈中。嘌呤霉素同A位點結合后，不會參與隨后的任何反應，從而導致蛋白質合成的提前終止并釋放出C-末端含有嘌呤霉素的不成熟多肽，從而殺死革蘭氏陽性菌、各種動物和昆蟲細胞。

Puromycin常用于篩選通過質粒轉染、病毒感染、轉化等方法能表達pac基因（puror）的真核或原核多克隆或單克隆細胞。pac基因編碼嘌呤霉素N-乙酰轉移酶 (PAC，Puromycin N-acetyl-tranferase)，賦予機體對嘌呤霉素產生抗性。這一特性目前普遍應用于篩選表達pac基因的哺乳動物穩定細胞株。嘌呤霉素在細胞穩轉株篩選中的普遍應用與慢病毒載體的特性有關，現在很多商業化的慢病毒載體都攜帶pac基因(一般在質粒圖譜上標記為puror)，從而利用嘌呤霉素篩選特定基因的穩定表達細胞株。Puromycin的特點是快速作用于細胞，一般2天內可以殺死99% 的不表達pac基因的細胞。Puromycin不僅用于穩定細胞株的篩選，也用于穩定細胞株的維持。在某些特定情況下，嘌呤霉素也可以用來篩選轉化攜帶pac基因質粒的大腸桿菌菌株、酵母菌株等。

本品是無菌的嘌呤霉素鹽酸鹽溶液（10 mg/mL），經過濾除菌，可以直接用于細胞培養。

02/產品組分

03/保存條件

冰袋（wet ice）運輸。-20℃ 保存，有效期12個月。建議分裝保存，避免反復凍融。

04/產品特點

v 即用型試劑，無需進行試劑配置，簡單方便。

v 無菌制劑，可直接加入細胞使用。

05/實驗步驟

一、Dose-response curve or kill curve嘌呤霉素劑量反應曲線的確定(以shRNA轉染或者慢病毒感染為例）

嘌呤霉素的有效篩選濃度跟細胞類型、生長狀態、細胞密度、細胞代謝及細胞所處細胞周期等因素相關。為了篩選到穩定表達的shRNA或感染病毒的細胞株，確定殺死未轉染/感染細胞的最小濃度嘌呤霉素非常重要。 對于初次使用的細胞，一般需要通過實驗來確定適合自身實驗體系的劑量反應曲線(dose-response curve or kill curve)。

1. 提前一天在24孔板中以5~8×104cells/孔的密度接種細胞，設置劑量梯度及復孔，37℃ 5% CO2細胞培養箱內培養過夜。

2. 次日，將培養過夜后的細胞更換含不同濃度嘌呤霉素的篩選培養基（新鮮配置），

如0、1、2.5、5、7.5、10、15、20 μg/mL等濃度梯度，設置至少5個濃度梯度，37℃ 5% CO2細胞培養箱中繼續培養。

3. 由于嘌呤霉素可以快速作用于細胞，一般2天內可以殺死99% 的未表達pac基因的細胞，所以在添加嘌呤霉素后的1-2天就可以觀察細胞存活率，從而確定有效殺死正常細胞的藥物最小濃度。如果細胞耐藥性比較強，需要每日監測細胞，觀察存活細胞率，約 2-3 天更換新鮮的篩選培養基，一般4-10天內即可確定嘌呤霉素的最小濃度。

二、建議使用濃度

哺乳動物細胞：1-10 μg/mL，最佳濃度需根據嘌呤霉素劑量反應曲線來確定。

大腸桿菌：LB瓊脂培養基篩選穩定轉化pac基因的大腸桿菌，使用濃度為125 μg/mL。

? 使用嘌呤霉素篩選大腸桿菌穩轉株需要精確的pH值調節，并受宿主細胞本身的影響。

三、哺乳動物穩定表達細胞株的篩選

轉染含有pac基因的質?；蛘吒腥竞性摶虻牟《竞?，即可使用嘌呤霉素篩選穩定表達株。

1. 細胞轉染或感染48小時后，將細胞置于含有適當濃度嘌呤霉素的新鮮培養基中培養，此為處理組。

? 當細胞處于分裂活躍期時，抗生素作用明顯。細胞過于密集，抗生素產生的效力會明顯下降，所以細胞的密度最好不超過35%。轉染或感染48小時后，如果細胞過密也可以消化后重新接種細胞，培養過夜后即可進行嘌呤霉素篩選。

? 建議同時做一個空白正常細胞的對照組。

2. 每隔2-3天，更換含有嘌呤霉素的培養基。

3. 篩選2-10天后，對照組正常細胞應該100% 死亡，處理組中存活的細胞為表達pac基因的細胞。然后根據實驗目的進行多克隆或單克隆細胞的篩選。

? 應每日進行細胞生長狀態的觀察。嘌呤霉素的篩選至少需要24小時，有效濃度嘌呤霉素的篩選周期一般在2-10天。

4. 待細胞可以穩定生長后，嘌呤霉素的濃度可以減半用于后續的培養。在得到穩定表達細胞株后，一般建議嘌呤霉素也須持續加入，并2-3天更換含有嘌呤霉素的新鮮培養液。

06/適用范圍

Puromycin普遍應用于穩定細胞株的篩選和維持，也可以用來篩選轉化攜帶pac基因質粒的大腸桿菌菌株、酵母菌株等。

07/注意事項

1. 為了您的健康安全，請規范操作，穿戴實驗服與手套開展實驗。

2. 本產品對人體有害，操作時請小心，并注意有效防護以避免直接接觸人體或吸入體內。

3. 本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及治療。

08/實驗案例分析

1. 提前一天使用10 cm細胞培養皿培養ViralStars Lentivirus Packaging Cell Line（CL110001），待細胞密度為75% 左右開始包裝慢病毒。

2. 使用ViralStars LP Lentivirus Packaging Kit（LP110-10）進行慢病毒包裝，具體步驟參考LP110-10產品說明書。

3. 收集慢病毒上清液，300xg離心10分鐘以除去細胞碎片，0.22 μm濾器過濾，使用ViralStars LC Lentivirus Concentration Solution慢病毒濃縮試劑盒（LC110R）進行20倍濃縮，使用1 mL ViralStars LS Lentivirus Storage Solution（LS110R）重懸慢病毒顆粒。

4. 提前一天在24孔板中鋪Hela細胞，使用上述制備的慢病毒感染目的細胞HeLa。在EP管中做病毒10倍梯度稀釋，連續6個稀釋梯度。稀釋方法如下：準備6個?菌EP管，每個EP管中加?450μL 新鮮的*培養基（含10 μg/mL polybrene），取待測定病毒液50 μL加?到第?個EP管中（標記50 μL），混勻后取50 μL病毒稀釋液加?到第?個EP管中（標記5 μL），以此類推，直到稀釋到最后?管。棄去24孔板中原有的培養基，將稀釋好的病毒依次加入孔中，并做好標記，??操作，不要吹起細胞，置于培養箱中培養16 h。

5. 慢病毒感染16 h后，吸去帶病毒的培養基，在每個孔中再加入?500 μL?預熱的新鮮*培養基。

6. 使用含puromycin（5 μg/mL）的篩選培養基進行篩選，對篩選7天后的細胞進行結晶紫染色，并拍照記錄，實驗結果如圖2所示。

09/其他相關產品

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